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Micron Document

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<title>PCR-Optimierung</title>

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<h1 id="firstHeading" class="firstHeading mw-first-heading">PCR-Optimierung</h1>

</header>

</div>

Die PCR-Optimierung umfasst die gezielte Veränderung der Reaktionsbedingungen einer <a href="Polymerasekettenreaktion" class="mw-redirect" title="Polymerasekettenreaktion">Polymerasekettenreaktion</a>.

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Optimierungsparameter">Optimierungsparameter</h2></div>

Eine Optimierung PCR-verwandter Methoden umfasst die gezielte Veränderung verschiedener Parameter.

<ul><li>Wahl einer geeigneten <a href="Thermostabile_DNA-Polymerase" title="Thermostabile DNA-Polymerase">thermostabilen DNA-Polymerase</a></li>

<li>Entwurf der Sequenz des <a href="Primer" title="Primer">Primers</a> (<a href="Primerdesign" title="Primerdesign">Primerdesign</a>)</li>

<li>Veränderung der Konzentrationen von <a href="Substrat_(Biochemie)" title="Substrat (Biochemie)">Substraten</a> (DNA-Vorlage, Primer-Vorlage, dNTP-Konzentration)</li>

<li>Veränderung der Konzentrationen von Produkten (mehr kopierte DNA, korrektes Produkt, weniger Pyrophosphat),</li>

<li>Vermeidung von Störsubstanzen (z. T. Substrat-ähnliche <a href="Inhibitor" title="Inhibitor">Inhibitoren</a>)</li>

<li>Steuerung der Umgebungsbedingungen (<a href="Temperatur" title="Temperatur">Temperatur</a>, <a href="Thermostabilit%C3%A4t" title="Thermostabilität">Thermostabilität</a>, <a href="Ionenst%C3%A4rke" title="Ionenstärke">Ionenstärke</a>, <a href="Osmolarit%C3%A4t" class="mw-redirect" title="Osmolarität">Osmolarität</a>, <a href="Cofaktor_(Biochemie)" title="Cofaktor (Biochemie)">Cofaktoren</a>).</li></ul>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Polymerase">Polymerase</h2></div>

<div class="hauptartikel" role="navigation">→ Hauptartikel: <a href="Thermostabile_DNA-Polymerase" title="Thermostabile DNA-Polymerase">Thermostabile DNA-Polymerase</a></div>

Die Wahl einer geeigneten DNA-Polymerase hat einen Einfluss auf die Synthesemenge und Fehlerrate.

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Primer">Primer</h2></div>

<div class="hauptartikel" role="navigation">→ Hauptartikel: <a href="Primerdesign" title="Primerdesign">Primerdesign</a></div>

Das Primerdesign umfasst die Auswahl geeigneter DNA-Sequenzen für die Primer und der darauf basierenden <a href="Primerhybridisierung" title="Primerhybridisierung">Primerhybridisierungs</a>-Temperatur (synonym Annealing-Temperatur) in der PCR. Die Annealing-Temperatur der PCR liegt meistens zwei Grad Celsius unter der Schmelztemperatur der Primer, was einen Kompromiss zwischen einer möglichst vollständigen Primerhybridisierung und einer möglichst hohen Spezifität der Primerbindung darstellt.

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Substratkonzentration">Substratkonzentration</h2></div>

Die Endkonzentration der Primer während der PCR liegt zwischen 0,1 μM und 1μM (meistens 0,4 μM), die Konzentration an <a href="DNTP" class="mw-redirect" title="DNTP">dNTPs</a> beträgt für jede der vier <a href="Nukleinbase" class="mw-redirect" title="Nukleinbase">Nukleinbasen</a> etwa 100 – 1000 μM (meistens je 400 μM) und die Massenkonzentration der DNA von 1 bis 20 ng pro Mikroliter des PCR-Ansatzes (meistens 200 ng pro Ansatz).

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Temperaturzyklus">Temperaturzyklus</h2></div>

Die Dissoziation (das Schmelzen) der doppelsträngigen DNA wird meistens bei 95 °C durchgeführt. Daraufhin erfolgt die Hybridisierung (das Annealing) bei einer Primer-abhängigen Temperatur, zuletzt erfolgt die Synthese der DNA am jeweiligen Optimum der jeweiligen thermostabilen DNA-Polymerase bei 74 °C (Typ-A- und Typ-B-Polymerasen).

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Fehlerrate">Fehlerrate</h2></div>

Die Fehlerraten verschiedener Polymerasen (engl. fidelity) sind bekannt und beschrieben worden. Bakterielle thermostabile DNA-Polymerasen (Typ A) besitzen meist eine höhere Fehlerrate als Archaeische (Typ B), was an der proof reading-Exonukleaseaktivität der B-Typ-Polymerasen liegt. Die Fehlerrate der Taq-Polymerase beträgt 8 · 10−6 Fehler pro <a href="Basenpaar" title="Basenpaar">Basenpaar</a>, die der KOD-Polymerase 3,5 · 10−6 Fehler pro Basenpaar, die der Tli-Polymerase und der Herculase 2,8 · 10−6 Fehler pro Basenpaar, die der Pfu-Polymerase 1,3 · 10−6 Fehler pro Basenpaar und die der Pfu Ultra 4,3 · 10−7 Fehler pro Basenpaar.<a href="#cite_note-Cline-1">[1]</a><a href="#cite_note-PMID14511688-2">[2]</a>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Syntheserate">Syntheserate</h2></div>

Die Gesamt-Synthesegeschwindigkeit einer DNA-Polymerase hängt unter anderem von der Basissyntheserate und der Prozessivität der Polymerase sowie der Anwesenheit von <a href="Hemmstoff" class="mw-redirect" title="Hemmstoff">Hemmstoffen</a> (z. B. hemmende Produkte, PCR-Inhibitoren) ab.

Die Basissyntheseraten verschiedener Polymerasen (engl. productivity) sind verglichen worden.<a href="#cite_note-PMID14511688-2">[2]</a> Die Syntheserate der Taq-Polymerase liegt bei etwa 60 Basenpaaren pro Sekunde. Unter den unmodifizierten thermostabilen DNA-Polymerasen liegt nur die Syntheserate der KOD-Polymerase über 100 Basenpaaren pro Sekunde (circa 120 bp/s).<a href="#cite_note-3">[3]</a> Unter den modifizierten thermostabilen DNA-Polymerasen sind verschiedene Mutationen beschrieben worden, die die Syntheserate steigern.<a href="#cite_note-4">[4]</a><a href="#cite_note-5">[5]</a> Die KOD-Polymerase und einige modifizierte thermostabile DNA-Polymerasen (iProof, Pfu Ultra, Phusion, Velocity oder Z-Taq) werden aufgrund ihrer hohen Syntheserate zu einer PCR-Variante mit kürzeren Amplifikationszyklen eingesetzt (Fast-PCR, High-speed PCR).

Die Prozessivität (engl. processivity) beschreibt die durchschnittliche Anzahl an Basenpaaren, bevor eine Polymerase von der DNA-Vorlage (engl. template) abfällt. Die Prozessivität der verwendeten Polymerase begrenzt den maximalen Abstand des Primers zur Sonde in der <a href="Real_time_quantitative_PCR" class="mw-redirect" title="Real time quantitative PCR">real time quantitative PCR</a>. Die Prozessivität einer Taq-Polymerase liegt bei etwa 200 Basenpaaren.

Beim Erhitzen der <a href="DNTP" class="mw-redirect" title="DNTP">dNTPs</a> in wässrigen Lösungen <a href="Desaminierung" title="Desaminierung">desaminieren</a> die <a href="Cytosin" title="Cytosin">Cytosin</a>-Reste im dCTP kontinuierlich zu <a href="Uracil" title="Uracil">Uracil</a>-Resten, welche die Syntheserate der DNA-Polymerasen herabsetzen.<a href="#cite_note-6">[6]</a> Um dieser als dUTP-Vergiftung bezeichneten Herabsetzung entgegenzuwirken, wird bei Produkten von über 5 <a href="Kilobase" class="mw-redirect" title="Kilobase">Kilobasen</a> gelegentlich bei einer PCR mit archaeischen Polymerasen eine thermostabile dUTPase hinzugesetzt.<a href="#cite_note-PMID14511688-2">[2]</a><a href="#cite_note-Cho-7">[7]</a><a href="#cite_note-8">[8]</a> Analog desaminieren parallel auch die <a href="Adenosin" title="Adenosin">Adenosin</a>-Reste im dATP zu Desoxyinosintriphosphat (dITP), was ebenfalls zu einer Hemmung der archaeischen DNA-Polymerasen führen kann. Daher kann auch eine thermostabile dITPase zur PCR mit archaeischen DNA-Polymerasen hinzugesetzt werden.<a href="#cite_note-9">[9]</a>

Da die DNA-Polymerase die DNA-Kettenverlängerung unter Abspaltung von <a href="Pyrophosphat" class="mw-redirect" title="Pyrophosphat">Pyrophosphat</a> katalysiert, kann die Produktkonzentration durch Zugabe einer thermostabilen <a href="Pyrophosphatase" class="mw-redirect" title="Pyrophosphatase">Pyrophosphatase</a> erhöht werden. Die Pyrophosphatase katalysiert die <a href="Hydrolyse" title="Hydrolyse">Hydrolyse</a> des Pyrophosphats zu <a href="Phosphat" class="mw-redirect" title="Phosphat">Phosphaten</a>, wodurch weniger Produkthemmung entsteht, da die <a href="Gleichgewichtskonstante" class="mw-redirect" title="Gleichgewichtskonstante">Gleichgewichtskonstante</a> der Reaktion zu Gunsten der synthetisierten DNA verändert wird.<a href="#cite_note-PMID_9105629-10">[10]</a><a href="#cite_note-11">[11]</a>

Das <a href="Stoffel-Fragment" title="Stoffel-Fragment">Stoffel-Fragment</a> ist eine um die Exonukleasefunktion gekürzte Taq-Polymerase, wodurch die Produktkonzentration und die Thermostabilität des Enzyms erhöht wird.

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Falsch_negative_Ergebnisse">Falsch negative Ergebnisse</h2></div>

Wird eine PCR durchgeführt und im Ergebnis keine vervielfältigte DNA nachgewiesen, obwohl die nachzuweisende Sequenz tatsächlich vorhanden war, spricht man von einem falsch negativen Ergebnis.

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Substratverweigerung">Substratverweigerung</h3></div>

Die vor allem bei den archaeischen Polymerasen gelegentlich vorkommende „Verweigerung“ schwieriger Substrate (engl. fussiness) kann zu <a href="Falsch_negativ" class="mw-redirect" title="Falsch negativ">falsch negativen</a> Ergebnissen führen, z. B. bei <a href="ADNA" title="ADNA">aDNA</a>, DNA mit hohem <a href="GC-Anteil" class="mw-redirect" title="GC-Anteil">GC-Anteil</a>, <a href="Genom" title="Genom">genomischer</a> DNA oder DNA mit <a href="Sekund%C3%A4rstruktur" title="Sekundärstruktur">Sekundärstrukturen</a>. Durch Zugabe schwach <a href="Hofmeister-Reihe" title="Hofmeister-Reihe">chaotroper</a> Moleküle wie <a href="Dimethylsulfoxid" title="Dimethylsulfoxid">Dimethylsulfoxid</a>, <a href="Formamid" title="Formamid">Formamid</a>, <a href="Trehalose" title="Trehalose">Trehalose</a> oder <a href="Betain" title="Betain">Betain</a> kann die Hemmung der Reaktion gemindert werden.<a href="#cite_note-12">[12]</a><a href="#cite_note-13">[13]</a><a href="#cite_note-14">[14]</a><a href="#cite_note-15">[15]</a> Der Einsatz von <a href="Chaotrope_Verbindung" title="Chaotrope Verbindung">chaotropen Verbindungen</a> kann die Schmelztemperatur der Primer um bis zu 5 °C absenken, weshalb die Annealing-Temperatur der PCR entsprechend angepasst werden muss. Eine Erhöhung der Konzentration an <a href="Magnesium" title="Magnesium">Magnesium</a>-<a href="Ion" title="Ion">Ionen</a>, als Cofaktor der thermostabilen DNA-Polymerasen, über 1,5 mM hinaus erhöht die <a href="Produkt_(Chemie)" title="Produkt (Chemie)">Produktkonzentration</a> auf Kosten der Fehlerrate.<a href="#cite_note-16">[16]</a> Manche <a href="Alkylanzien" title="Alkylanzien">alkylierte</a> Nukleinbasen können keine Basenpaarung mit den vier natürlichen Nukleinbasen eingehen, weshalb es an diesen Stellen zu einer Unterbrechung der Amplifikation kommt. Durch Zugabe bestimmter modifizierter Nukleinbasen kann eine Basenpaarung bei der PCR erfolgen.<a href="#cite_note-DOI10.1021/ja5100542-17">[17]</a>

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Inhibitoren">Inhibitoren</h3></div>

Verschiedene Substanzen können thermostabile DNA-Polymerasen in der PCR stören, z. B. <a href="Virostatika" class="mw-redirect" title="Virostatika">Virostatika</a>, <a href="H%C3%A4moglobin" title="Hämoglobin">Hämoglobin</a>, <a href="Heparin" title="Heparin">Heparin</a>, <a href="Polysaccharide" title="Polysaccharide">Polysaccharide</a>, <a href="Hormone" class="mw-redirect" title="Hormone">Hormone</a>, <a href="IgG" class="mw-redirect" title="IgG">IgG</a>, <a href="Lactoferrin" title="Lactoferrin">Lactoferrin</a>, <a href="Myoglobin" title="Myoglobin">Myoglobin</a>, <a href="Cholat" class="mw-redirect" title="Cholat">Gallsäuren</a> und ihre <a href="Salze" title="Salze">Salze</a>, <a href="Harns%C3%A4ure" title="Harnsäure">Harnsäure</a> und ihre Salze, <a href="Phenol" title="Phenol">Phenol</a>, <a href="Polyphenole" title="Polyphenole">Polyphenole</a>, <a href="Protease" class="mw-redirect" title="Protease">Proteasen</a>, <a href="Wertigkeit_(Chemie)" title="Wertigkeit (Chemie)">divalente</a> <a href="Kation" title="Kation">Kationen</a> außer Magnesium, <a href="Ethylendiamintetraessigs%C3%A4ure" title="Ethylendiamintetraessigsäure">EDTA</a> und andere <a href="Chelator" class="mw-redirect" title="Chelator">Chelatoren</a>, <a href="Humins%C3%A4uren" title="Huminsäuren">Huminsäuren</a>, <a href="Ton_(Bodenart)" title="Ton (Bodenart)">Tonerde</a>,<a href="#cite_note-18">[18]</a> <a href="Kollagen" class="mw-redirect" title="Kollagen">Kollagen</a>, <a href="H%C3%A4matine" title="Hämatine">Hämatine</a>, <a href="Indigo" title="Indigo">Indigo</a>, <a href="Melanin" class="mw-redirect" title="Melanin">Melanin</a> und <a href="Tannine" title="Tannine">Tannine</a>.<a href="#cite_note-19">[19]</a><a href="#cite_note-20">[20]</a> Im Allgemeinen erfordern Proben mit diesen Stoffen eine weitere <a href="DNA-Reinigung" title="DNA-Reinigung">DNA-Reinigung</a> vor einer Verwendung in der PCR. Bei Vorhandensein höherer Konzentrationen an Polyphenolen kann <a href="Polyvinylpyrrolidon" title="Polyvinylpyrrolidon">Polyvinylpyrrolidon</a> hinzugegeben werden, das diese bindet.<a href="#cite_note-21">[21]</a> Ebenso wird <a href="Bovines_Serumalbumin" title="Bovines Serumalbumin">bovines Serumalbumin</a> zur Bindung von Inhibitoren eingesetzt.<a href="#cite_note-22">[22]</a>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Falsch_positive_Ergebnisse">Falsch positive Ergebnisse</h2></div>

Ein falsch positives Ergebnis ist bei einer PCR eine Erzeugung von PCR-Produkten, die nicht der gewünschten und zu vervielfältigenden DNA-Sequenz entsprechen. Sie führt gegebenenfalls zu unerwünschten Banden in einem <a href="Agarosegel" class="mw-redirect" title="Agarosegel">Agarosegel</a>.

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Kontaminationen">Kontaminationen</h3></div>

DNA-<a href="Stoffreinheit" title="Stoffreinheit">Kontaminationen</a> und eine unspezifische <a href="Hybridisierung_(Molekularbiologie)" title="Hybridisierung (Molekularbiologie)">Hybridisierung</a> der <a href="Primer" title="Primer">Primer</a> vor und während der PCR können zu <a href="Falsch_positiv" class="mw-redirect" title="Falsch positiv">falsch positiven</a> Ergebnissen führen. Insbesondere Kontaminationen sind ein großes Problem. Häufig gelangt DNA von Personen, die an der Analyse beteiligt sind, oder die an der Herstellung von Komponenten mitgewirkt haben, in die Probe. Beim <a href="Forensik" title="Forensik">forensischen</a> Einsatz (vgl. <a href="DNA-Analyse" title="DNA-Analyse">DNA-Analyse</a> und <a href="Genetischer_Fingerabdruck" title="Genetischer Fingerabdruck">Genetischer Fingerabdruck</a>) machte das <a href="Heilbronner_Phantom" title="Heilbronner Phantom">Heilbronner Phantom</a> Schlagzeilen: Kriminalisten jagten lange Zeit eine vermeintliche Serientäterin, bis sich herausstellte, dass die DNA in Wirklichkeit von der Mitarbeiterin einer Zulieferfirma stammte. Problematisch können bei biologischen Proben auch bakterielle Verunreinigungen, Verunreinigungen durch Parasiten oder Nahrungsbestandteile und ähnliches sein. So wurde der wurmartige Organismus <a href="Xenoturbella" title="Xenoturbella">Xenoturbella</a> längere Zeit fälschlich als Vertreter der <a href="Weichtiere" title="Weichtiere">Weichtiere</a> angesehen, weil man DNA aus dem Darm, welche aus Nahrungsorganismen stammte, irrtümlich für die DNA des Wurms selbst hielt.<a href="#cite_note-23">[23]</a> Besonders bei sehr alter, möglicherweise teilweise fragmentierter DNA, z. B. aus <a href="Fossil" title="Fossil">Fossilien</a>, ist besondere Vorsicht geboten. Dies gilt besonders dann, wenn dem Menschen verwandte Sequenzen, z. B. das Erbgut des <a href="Neanderthaler" class="mw-redirect" title="Neanderthaler">Neanderthalers</a>, analysiert wird.

Gelegentlich wird zum enzymatischen Abbau von möglichen DNA-Kontaminationen im Reaktionsansatz eine Uracil-N-Glykosylase hinzugefügt, die im ersten Temperaturzyklus denaturiert wird.<a href="#cite_note-24">[24]</a> Die Uracil-N-Glykosylase baut Uracil-enthaltende PCR-Produkte ab, die entstehen, wenn das Labor zuvor bei PCR zu reinen Nachweiszwecken von dTTP auf dUTP umgestellt hat und dafür Polymerasen vom Typ A verwendet hat. Dies kann jedoch bei niedrigen Konzentrationen an DNA-Ausgangsmaterial zu falsch negativen Ergebnissen führen.<a href="#cite_note-25">[25]</a>

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Hot-Start">Hot-Start</h3></div>

Die <a href="Beurteilung_eines_Klassifikators" class="mw-redirect" title="Beurteilung eines Klassifikators">Vorlagenspezifität</a> der Polymerasen (engl. specificity) zur Vermeidung der Bindung an unerwünschte DNA-Vorlagen oder fehlgebundene Primer, und die daraus folgende Erzeugung unerwünschter Reaktionsprodukte vor Beginn des ersten Temperaturzyklus, wird durch die Verwendung von Hot-Start-Polymerasen gesteigert. Beispiele sind die mit einem Antikörper gehemmte Hot-Start Pfu Turbo, die Platinum Pfx als kommerzielle KOD-Polymerase mit hemmendem Antikörper und die Platinum Taq als Antikörper-gehemmte Taq-Polymerase.<a href="#cite_note-PMID14511688-2">[2]</a> Diese Polymerasen werden unter anderem durch Inaktivierung mit <a href="Formaldehyd" title="Formaldehyd">Formaldehyd</a>, durch eine <a href="Komplexierung" class="mw-redirect" title="Komplexierung">Komplexierung</a> des Magnesiums mit <a href="Phosphate" title="Phosphate">Phosphaten</a><a href="#cite_note-26">[26]</a> oder durch die Bindung eines <a href="Antik%C3%B6rper" title="Antikörper">Antikörpers</a> an ihrem <a href="Aktives_Zentrum" title="Aktives Zentrum">aktiven Zentrum</a> gehemmt.<a href="#cite_note-27">[27]</a><a href="#cite_note-28">[28]</a> Bei Erhitzen auf 95 °C <a href="Hydrolyse" title="Hydrolyse">hydrolysiert</a> das Formaldehyd,<a href="#cite_note-29">[29]</a><a href="#cite_note-30">[30]</a><a href="#cite_note-31">[31]</a> alternativ werden die Magnesiumionen freigesetzt oder der Antikörper wird dabei <a href="Denaturierung_(Biochemie)" title="Denaturierung (Biochemie)">denaturiert</a>. Eine vierte Variante ist eine an <a href="Polymerdispersion" title="Polymerdispersion">Latex</a>-Perlen über <a href="Hydrophober_Effekt" class="mw-redirect" title="Hydrophober Effekt">hydrophobe Effekte</a> <a href="Adsorption" title="Adsorption">adsorbierte</a> Polymerase, die bei zunehmender Temperatur in Lösung geht. Bei der fünften, ältesten, Variante wird der Reaktionsansatz ohne Polymerase mit <a href="Wachs" title="Wachs">Wachs</a> überschichtet und die Polymerase auf das erkaltete Wachs gegeben. Bei Erhitzen schmilzt die Wachsschicht und die Polymerase vermischt sich mit dem Reaktionsansatz.<a href="#cite_note-32">[32]</a>

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Nested_PCR">Nested PCR</h3></div>

<div class="hauptartikel" role="navigation">→ Hauptartikel: <a href="Nested_PCR" title="Nested PCR">Nested PCR</a></div>

Durch Verwendung zweier PCR mit unterschiedlichen Primerpaaren kann die Sensitivität und die Spezifität erhöht werden.

<div class="mw-heading mw-heading3"><h3 id="Substratspezifität">Substratspezifität</h3></div>

Die Bevorzugung einzelner Nukleotide durch eine thermostabile DNA-Polymerase wird als Nukleotidspezifität (engl. bias ‚Vorliebe‘, ‚Voreingenommenheit‘) bezeichnet. Bei der PCR-basierten <a href="DNA-Sequenzierung" title="DNA-Sequenzierung">DNA-Sequenzierung</a> mit Kettenabbruchsubstraten (<a href="Didesoxymethode" class="mw-redirect" title="Didesoxymethode">Didesoxymethode</a>) ist oftmals deren gleichmäßiger Einbau und somit eine gleichmäßige Erzeugung aller Kettenabbruchprodukte erwünscht, um eine höhere Sensitivität und eine leichtere Auswertung zu ermöglichen. Hierzu wurde eine KlenTaq-Polymerase durch Deletion erzeugt und durch <a href="Ortsspezifische_Mutagenese" class="mw-redirect" title="Ortsspezifische Mutagenese">ortsspezifische Mutagenese</a> ein Phenylalanin an Position 667 gegen Tyrosin getauscht (kurz: F667Y) und als Thermo Sequenase bezeichnet.<a href="#cite_note-PMID_9105629-10">[10]</a><a href="#cite_note-33">[33]</a> Diese Polymerase kann auch für den Einbau <a href="Fluoreszenzmarkierung" title="Fluoreszenzmarkierung">fluoreszenzmarkierter</a> <a href="Didesoxyribonukleosid-Triphosphate" title="Didesoxyribonukleosid-Triphosphate">Didesoxynukleotide</a> verwendet werden.<a href="#cite_note-34">[34]</a>

<div class="hauptartikel" role="navigation">→ Hauptartikel: <a href="RT-PCR#Prinzip" class="mw-redirect" title="RT-PCR">RT-PCR#Prinzip</a></div>

Eine Veränderung der Vorlagenspezifität von DNA zu <a href="RNA" class="mw-redirect" title="RNA">RNA</a> kann zur Erzeugung thermostabiler RNA-abhängiger DNA-Polymerasen genutzt werden, die auch als thermostabile <a href="Reverse_Transkriptase" title="Reverse Transkriptase">reverse Transkriptasen</a> bezeichnet werden. Konventionelle zur <a href="RT-PCR" class="mw-redirect" title="RT-PCR">RT-PCR</a> verwendete reverse Transkriptasen <a href="Retroviren" title="Retroviren">retroviralen</a> Ursprungs, wie die AMV- und die MoMuLV-Reverse-Transkriptase, sind bei 95 °C nicht thermostabil. Bei den niedrigeren Temperaturen einer reversen Transkription mit diesen Enzymen kommen jedoch unspezifische Bindungen von Primern an die DNA-Vorlage und Sekundärstrukturen in der DNA-Vorlage vor, welche einerseits unerwünschte Produkte begünstigen und andererseits die Synthese des korrekten Produkts verhindern können. Allerdings kann die reverse Transkriptase von AMV bis zu 70 °C eingesetzt werden.<a href="#cite_note-35">[35]</a> Zum Erreichen einer Thermostabilität bei 95 °C wurde zunächst die Vorlagenspezifität thermostabiler DNA-Polymerasen durch Austausch des Cofaktors (zweiwertige Magnesiumionen) gegen zweiwertige <a href="Mangan" title="Mangan">Manganionen</a> herabgesetzt, so dass mit einer DNA-abhängigen thermostabilen Polymerase auch RNA in einer RT-PCR als Vorlage zur Synthese von DNA eingesetzt werden konnte.<a href="#cite_note-36">[36]</a> Da die Syntheserate der Taq-Polymerase mit Manganionen relativ niedrig war, wurde bei dieser Variante der RT-PCR zunehmend die Tth-Polymerase eingesetzt.<a href="#cite_note-37">[37]</a> Jedoch erhöhte die Zugabe von Manganionen auch die Anzahl fehlerhafter Produkte und erhöhte die notwendige Menge an Vorlagen-DNA, weshalb diese Enzyme heute kaum noch zur reversen Transkription eingesetzt werden. Diese Probleme konnten mit der thermostabilen 3173-Polymerase aus thermophilen <a href="Bakteriophagen" title="Bakteriophagen">Bakteriophagen</a> vermieden werden, welche die hohen Temperaturen einer PCR für eine längere Zeit übersteht und RNA als Vorlage bevorzugt.<a href="#cite_note-38">[38]</a>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Literatur">Literatur</h2></div>

<ul><li><a href="Joseph_Sambrook" title="Joseph Sambrook">J. Sambrook</a>, <a href="Tom_Maniatis" title="Tom Maniatis">T. Maniatis</a>, D. W. Russel: Molecular cloning: a laboratory manual. <a href="Cold_Spring_Harbor_Laboratory" title="Cold Spring Harbor Laboratory">Cold Spring Harbor Laboratory</a> Press; 3rd edition (2001), ISBN 0-87969-577-3.</li>

<li>Cornel Mülhardt: <a href="Der_Experimentator" title="Der Experimentator">Der Experimentator</a>: Molekularbiologie/Genomics, Springer 2008, ISBN 3-8274-2036-9.</li></ul>

<div class="mw-heading mw-heading2"><h2 id="Einzelnachweise">Einzelnachweise</h2></div>

<li id="cite_note-Cline-1"><a href="#cite_ref-Cline_1-0">↑</a> J. Cline, J. C. Braman, H. H. Hogrefe: PCR fidelity of pfu DNA polymerase and other thermostable DNA polymerases. In: <a href="Nucleic_Acids_Research" title="Nucleic Acids Research">Nucleic Acids Research</a>. (1996), Bd. 24(18), S. 3546-51. <a class="external mw-magiclink-pmid" rel="nofollow" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/8836181?dopt=Abstract">PMID 8836181</a>; <a rel="nofollow" class="external text" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC146123/">PMC 146123</a> (freier Volltext).

</li>

<li id="cite_note-PMID14511688-2">↑ <a href="#cite_ref-PMID14511688_2-0">a</a> <a href="#cite_ref-PMID14511688_2-1">b</a> <a href="#cite_ref-PMID14511688_2-2">c</a> <a href="#cite_ref-PMID14511688_2-3">d</a> Bahram Arezi, Weimei Xing, Joseph A. Sorge, Holly H. Hogrefe: <cite style="font-style:italic">Amplification efficiency of thermostable DNA polymerases</cite>. In: <cite style="font-style:italic"><a href="Analytical_Biochemistry" title="Analytical Biochemistry">Analytical Biochemistry</a></cite>. Band 321, Nr. 2, 15. Oktober 2003, S. 226–235, <a href="Digital_Object_Identifier" title="Digital Object Identifier">doi</a>:<a rel="nofollow" class="external text" href="https://doi.org/10.1016/S0003-2697%2803%2900465-2">10.1016/S0003-2697(03)00465-2</a>, <a class="external mw-magiclink-pmid" rel="nofollow" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/14511688?dopt=Abstract">PMID 14511688</a>.<span class="Z3988" title="ctx_ver=Z39.88-2004&rft_val_fmt=info%3Aofi%2Ffmt%3Akev%3Amtx%3Ajournal&rfr_id=info:sid/de.wikipedia.org:PCR-Optimierung&rft.atitle=Amplification+efficiency+of+thermostable+DNA+polymerases&rft.au=Bahram+Arezi%2C+Weimei+Xing%2C+Joseph+A.+Sorge%2C+...&rft.date=2003-10-15&rft.doi=10.1016%2FS0003-2697%2803%2900465-2&rft.genre=journal&rft.issue=2&rft.jtitle=Analytical+Biochemistry&rft.pages=226-235&rft.pmid=14511688&rft.volume=321" style="display:none">  <a rel="nofollow" class="external text" href="http://www.gene-quantification.de/arezi-2003.pdf">PDF</a>.

</li>

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